Ciprofloxacin ist ein synthetisches antibakterielles Mittel mit einem breiten Wirkungsspektrum aus der Gruppe der Fluorchinolone.
Wirkmechanismus
Ciprofloxacin hat Aktivität im vitro für eine große Auswahl von Gram-negativen und Gram-positiven Mikroorganismen. Die bakterizide Wirkung von Ciprofloxacin wird durch die Hemmung von bakteriellen Topoisomerasen II (Topoisomerase II (DNA-Gyrase) und Topoisomerase IV), die für die Replikation, Transkription, Reparatur und Rekombination von bakterieller DNA notwendig sind, bewirkt.
Mechanismen des Widerstands
Widerstand im vitro Ciprofloxacin wird häufig durch Punktmutationen von bakteriellen Topoisomerasen und DNA-Gyrase verursacht und entwickelt sich langsam, durch mehrstufige Mutationen.
Einzelne Mutationen können eher zu einer Abnahme der Sensitivität als zur Entwicklung der klinischen Stabilität führen, aber multiple Mutationen führen hauptsächlich zur Entwicklung einer klinischen Resistenz gegen Ciprofloxacin und zur Kreuzresistenz gegenüber Chinolon-Arzneimitteln.
Resistenz gegen Ciprofloxacin, wie auch gegen viele andere Antibiotika, kann durch eine Abnahme der Permeabilität der bakteriellen Zellwand entstehen (wie es oft der Fall ist) Pseudomonas Aeruginosa) und / oder Aktivierung der Ausscheidung aus der Mikrobenzelle (Efflux). Die Entwicklung von Resistenz aufgrund des kodierenden Gens, das auf Plasmiden lokalisiert ist, wurde berichtet Qnr. Resistenzmechanismen, die zur Inaktivierung von Penicillinen, Cephalosporinen, Aminoglycosiden, Makroliden und Tetracyclinen führen, beeinträchtigen wahrscheinlich nicht die antibakterielle Aktivität von Ciprofloxacin. Mikroorganismen, die gegen diese Arzneimittel resistent sind, können gegenüber Ciprofloxacin empfindlich sein.
Die minimale bakterizide Konzentration (MBC) übersteigt die minimale Hemmkonzentration (MHK) in der Regel nicht um mehr als das Doppelte.
Empfindlichkeitsprüfung im vitro
Reproduzierbare Kriterien für die Prüfung der Empfindlichkeit gegenüber Ciprofloxacin, die vom Europäischen Komitee zur Bestimmung der Antibiotikaempfindlichkeit (EUCAST) sind in der folgenden Tabelle aufgeführt.
Boundary MIC-Werte (mg / L) in klinischen Settings für Ciprofloxacin (Europäisches Komitee zur Bestimmung der Antibiotika- Sensitivität)
Mikroorganismus | Empfindlich | Beständig |
Enterobacteriaceae | ≤0,5 | >1 |
Pseudomonas spp. | ≤0,5 | >1 |
Acinetobacter spp. | <1 | >1 |
Staphylococcus1 spp. | ≤1 | >1 |
Streptococcus pneumoniae2 | ≤0,125 | >2 |
Haemophilus influenzae und Moraxella catarrhalis3 | ≤0,5 | >0,5 |
Neisseria gonorrhoeae Meningokokken | ≤0,03 | >0,06 |
Grenzwerte, die nicht mit mikrobiellen Spezies assoziiert sind4 | ≤0,5 | >1 |
1 Staphylococcus spp.: Borderline-Werte für Ciprofloxacin und Ofloxacin sind mit Hochdosiertherapie verbunden.
2 Streptococcus pneumoniae: Wildtyp S. pneumoniae gilt nicht als empfindlich gegenüber Ciprofloxacin und gehört damit zur Kategorie der Mikroorganismen mit mittlerer Empfindlichkeit.
3 Stämme mit einem MHK-Wert, der größer ist als die Schwellenempfindlichkeit / mäßig empfindliche Schwellenwerte sind sehr selten, und bis jetzt wurden keine Berichte darüber veröffentlicht. Tests zur Identifizierung und antimikrobiellen Empfindlichkeit beim Nachweis solcher Kolonien müssen wiederholt werden, und die Ergebnisse sollten sein bestätigt bei der Analyse der Kolonien im Referenzlabor. Bis zum Nachweis einer klinischen Reaktion für Stämme mit bestätigten MHK-Werten, die den aktuellen Resistenzgrenzwert überschreiten, sollten sie als resistent betrachtet werden. Haemophilus spp. / Moraxella spp.: Es ist möglich, Stämme zu identifizieren H. influenzae mit einer geringen Empfindlichkeit gegenüber Fluorchinolonen (MIC für Ciprofloxacin - 0,125-0,5 mg / l). Nachweis der klinischen Bedeutung eines geringen Widerstandes bei Atemwegsinfektionen durch H. influenzae, Nein.
4 Grenzwerte, die nicht mit mikrobiellen Spezies assoziiert sind, wurden hauptsächlich auf der Basis von pharmakokinetischen / pharmakodynamischen Daten bestimmt und sind für bestimmte Spezies nicht von der MHK-Verteilung abhängig. Sie gelten nur für Arten, für die keine spezifische Empfindlichkeitsschwelle festgelegt wurde, und nicht für solche, für die eine Empfindlichkeitsprüfung nicht empfohlen wird. Für bestimmte Stämme kann die Ausbreitung des erworbenen Widerstandes in Abhängigkeit von der geographischen Region und im Laufe der Zeit variieren. In dieser Hinsicht ist es wünschenswert, lokale Informationen über die Resistenz zu haben, insbesondere wenn schwere Infektionen behandelt werden.
Daten aus dem Institut für Klinische und Laboratoriumstandards für MHK-Grenzwerte (mg / L) und Diffusionstests (Zonendurchmesser [mm]) mit Platten, die 5 μg Ciprofloxacin enthalten, sind in der folgenden Tabelle aufgeführt.
Boundary MIC-Werte (mg / L) und Diffusionstest (mm) mit Scheiben (Institut für Klinische und Labor-Standards)
Mikroorganismus | Empfindlich | Mittlere | Beständig |
Enterobacteriaceae | <11 | 21 | >41 |
>212 | 16-202 | <152 |
Enterococcus spp. | 11 | 21 | >41 |
>212 | 16-202 | <152 |
Haemophilus spp. | <13 | - | - |
>214 | - | - |
Neisseria gonorrhoeae | <0,065 | 0,12-0,55 | >15 |
>415 | 28-405 | <275 |
Meningokokken | <0,036 | 0,066 | >0,126 |
>357 | 33-347 | <327 |
Bacillus anthracis Yersinia pestis | <0,251 | - | - |
Francisella tularensis | <0,53 | - | - |
1 Dieser reproduzierbare Standard ist nur für Verdünnungen mit Brühe anwendbar, die kationisch korrigierte Mueller-Hinton-Bouillon (SAMS) verwendet, die mit Luftzugang bei einer Temperatur von 35 ± 2 ° C für 16-20 h für Stämme inkubiert wird Enterobacteriaceae, Pseudomonas aeruginosaandere Bakterien, die nicht zur Familie der Enterobacteriaceae gehören, Staphylococcus spp., Enterococcus spp. und Bacillus anthracis; 20-24 Stunden für Acinetobacter spp., 24 h für Y. pestis (bei ungenügendem Wachstum weitere 24 Stunden inkubieren).
2 Dieser reproduzierbare Standard gilt nur für Diffusionstests mit Müller-Hinton-Agarplatten, die 16-18 Stunden lang mit Luft bei einer Temperatur von 35 ± 2 ° C inkubiert werden.
3 Dieser reproduzierbare Standard ist nur für Diffusionstests anwendbar, bei denen Discs verwendet werden, um die Empfindlichkeit zu bestimmen Haemophilus influenzae und Haemophilus parainfluenzae unter Verwendung eines Bouillon-Testmediums für Haemophilus spp. (NTM), das 20 bis 24 Stunden lang mit Luft bei einer Temperatur von 35 ± 2 ° C inkubiert wird.
4 Dieser reproduzierbare Standard gilt nur für Diffusionstests unter Verwendung von Disks unter Verwendung eines NTM-Testmediums, das in 5% iger Inkubation inkubiert wird. CO2 bei einer Temperatur von 35 ± 2 ° C für 16-18 Stunden.
5 Dieser reproduzierbare Standard gilt nur für Sensitivitätstests (Diffusionstest unter Verwendung von Zonenscheiben und Agar-Agar für MIC) unter Verwendung von Gonokokkenagar und 1% des Wachstumsadditivs bei 36 ± 1 ° C (nicht über 37 ° C) in 5% CO2 für 20-24 Stunden.
6 Dieser reproduzierbare Standard gilt nur für Verdünnungstests mit Bouillon unter Verwendung von kationisch korrigierter Mueller-Hinton-Bouillon (SAMS), ergänzt mit 5% Schafblut, das in 5% igem CO2 bei 35 ± 2ºC für 20 bis 24 Stunden.
7 Dieser reproduzierbare Standard ist nur für Tests anwendbar, bei denen eine kationisch korrigierte Mueller-Hinton-Brühe (SAMS) unter Zugabe eines spezifischen 2% igen Wachstumsadditivs verwendet wird, die 48 Stunden lang bei 35 ± 2 ° C mit Luftzutritt inkubiert wird.
Im vitro Empfindlichkeit gegenüber Ciprofloxacin
Für bestimmte Stämme kann die Ausbreitung des erworbenen Widerstands in Abhängigkeit von der geografischen Region und im Laufe der Zeit variieren. In diesem Zusammenhang ist es beim Testen der Empfindlichkeit eines Stammes wünschenswert, lokale Informationen über die Resistenz zu haben, insbesondere wenn schwere Infektionen behandelt werden. Wenn die lokale Prävalenz der Resistenz so groß ist, dass die Verwendung des Medikaments, zumindest für mehrere Arten von Infektionen, fragwürdig ist, ist es notwendig, einen Spezialisten zu konsultieren.
Im vitro Die Aktivität von Ciprofloxacin in Bezug auf die folgenden empfindlichen Stämme von Mikroorganismen wurde nachgewiesen:
Aerobe Gram-positive Mikroorganismen: Bazillus anthracis, Staphylococcus Aureus (Methicillin-sensitiv), Staphylococcus Saprophyticus, Streptococcus spp.
Aerobe Gram-negative Mikroorganismen: Aeromonas spp., Moraxella katarrhalisch ist, Brucella spp., Neisseria Meningitidis, Citrobacter koseri, Pasteurella spp., Francisella Tularensis, Salmonellen spp., Haemophilus Ducreyi, Shigella spp., Haemophilus influenzae, Vibrio spp., Legionellen spp., Yersinia Pestist.
Anaerobe Mikroorganismen: Mobiluncus spp.
Andere Mikroorganismen: Chlamydien Trachomatis, Chlamydien Lungenentzündung, Mycoplasma Hominis, Mycoplasma Lungenentzündung.
Ein unterschiedlicher Grad an Empfindlichkeit gegenüber Ciprofloxacin für die folgenden Mikroorganismen wurde nachgewiesen: Acinetobacter Baumanii, Burkholderia Cepacia, Campylobacter spp., Citrobacter freundii, Enterococcus faecalis, Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca, Morganella morganii, Neisseria gonorrhoeae, Proteus mirabilis, Proteus vulgaris, Providencia spp., Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas fluorescens, Serratia marcescens, Streptococcus pneumoniae, Peptostreptococcus spp., Propionibacterium acnes.
Es wird angenommen, dass die natürliche Resistenz gegen Ciprofloxacin besitzt Staphylococcus aureus (Methicillin-resistent), Stenotrophomonas maltophilia, ACtinomyces spp., Enterococcus faecium, Listeria monocytogenes, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticum, anaerobe Mikroorganismen (mit Ausnahme von Mobiluncus spp., Peptostreptococcus spp., Propionibacterium acnes).